Саратовский научно-медицинский ЖУРНАЛ

Оценка отклонений коагулограммы как фактора риска рецидива сквозного макулярного разрыва при использовании аутологичной кондиционированной плазмы

Резюме:

Цель: произвести оценку отклонения активности факторов свертывания крови как потенциального фактора риска неполного закрытия и развития рецидивов сквозных макулярных разрывов после проведения оперативного вмешательства с использованием аутологичной кондиционированной плазмы —АСР-массы. Материал и методы. Проведено когортное исследование с участием 62 пациентов (62 глаза) с первичным сквозным макулярным разрывом. Пациентам проведено лечение: микроинвазивная субтотальная витрэктомия с удалением эпиретинальной и внутренней пограничной мембран, аппликация АСР-массы, тампонада воздухом. Пациенты разделены на 2 группы: основную (31 пациент с отклонениями в коагулограмме) и контрольную (31 пациент с нормальными показателями коагулограммы). Результаты. Сравнение результатов оперативного лечения показало, что среди пациентов с отклонениями в коагулограмме рецидив макулярного разрыва наблюдался в 85,7% случаев, в контрольной группе данный показатель составил 14,3% (р=0,005). При оценке отклонений показателей коагулограммы среди пациентов с рецидивом макулярного разрыва выявлено, что в 83,3% случаев наблюдалось повышение протромбинового времени (р=0,042), в 75,0% случаев снижение концентрации фибриногена (р=0,049). Заключение. Отклонения в коагулограмме могут быть фактором риска неуспешного закрытия макулярного разрыва при использовании АСР-массы. Рецидив в 6 раза чаще выявлялся при увеличении протромбинового времени, а также при снижении показателя фибриногена ниже 2,0 г/л в крови пациентов.

Литература:
1. Forsaa VA, Lindtjorn В, Kvaloy JT, et al. Epidemiology and morphology of full-thickness macular holes. Acta Ophthal-mol. 2018;96(4):397-404. DOI:10.1111/aos.13618
2. Berco E, Tuli R, Sivachandran N, et al. Macular hole repair: The effect of size and nonsupine posture on postoperative outcomes. Digit J Ophthalmol. 2023;29(3):67-72. DOI:10.5693/djo.01.2023.05.001
3. Vaziri K, Schwartz SG, Kishor KS, et al. Rates of reoperation and retinal detachment after macular hole surgery. Ophthalmology. 2016;123(1 ):26-31. DOI:10.1016/j.ophtha. 2015.09.015
4. Шкворченко Д.О., Какунина С.А., Норман К.С. и др. Хирургическое лечение незакрывшихся после первичного вмешательства макулярных разрывов, Офтальмохирургия. 2023;3S:109-15.
5. Laviers Н, Papavasileiou Е, Bruce С, et al. The effect of ethnicity on anatomic success following macular hole surgery: A multicentre cohort study. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2023;261 (6): 1535-43. DOI:10.1007/s00417-022-05950-w
6. Yue H, Liu C, Zhang Y, et al. Etiologies and clinical characteristics of macular hole: An 8-year, single-center, retrospective study. Medicine (Baltimore). 2024;103(32):e37878. DOI:10.1097/MD.0000000000037878
7. Yu Y, Qi B, Liang X, et al. Intraoperative iatrogenic retinal breaks in 23-gauge vitrectomy for stage 3 and stage 4 idiopathic macular holes. Br J Ophthalmol. 2021 ;105(1 ):93-6. DOI:10.1136/bjophthalmol-2019-315579
8. Chang JS, Smiddy WE. Cost evaluation of surgical and pharmaceutical options in treatment for vitreomacular adhesions and macular holes. Ophthalmology. 2014;121(9):1720-6. DOM 0.1016/j.ophtha.2014.03.029
9. Parisi G, Gelormini F, Ricardi F, et al. Platelet rich plasma for primary macular hole: A case series. Eur J Ophthalmol. 2024;34(6): 1984-90. DOM0.1177/11206721241234419
10. Бикбов M.M., Зайнуллин P.M., Гильманшин Т. P. и др. Богатая тромбоцитами аутоплазма крови (АСР) — новый «инструмент» в маку-лярной хирургии. Точка зрения. Восток — Запад. 2020;2:12.
11. Ласькова И. В., Кравченко A. A., Усков Д. И. и др. Хирургическое лечение сквозных макулярных разрывов с использованием аутологичной кондиционированной плазмы (АСР). Современные технологии в офтальмологии. 2021;3:102-5.
12. Шкворченко Д.О., Захаров В. Д., Крупина Е.А. и др. Хирургическое лечение первичного макулярного разрыва с применением богатой тромбоцитами плазмы крови. Офтальмохирургия. 2017;3:27-30.
13. Klatte-Schulz F, Schmidt Т, Uckert М, et al. Comparative analysis of different platelet lysates and platelet rich preparations to stimulate tendon cell biology: An in vitro study. Int J Mol Sci. 2018;19(1):212. DOI:10.3390/ijms19010212
14. Alshehri FSM, Whyte CS, Mutch NJ. Factor Xlll-A: An indispensable "factor" in haemostasis and wound healing. Int J Mol Sci. 2021 ;22(6):3055. DOI:10.3390/ijms22063055
15. Долгов В. В., Свирин П. В. Лабораторная диагностика нарушений гемостаза. М.; Тверь: Триада, 2005; 227 с.
16. Wu Z, Sun J, Liao Z, et al. Activation of PAR1 contributes to ferroptosis of Schwann cells and inhibits regeneration of myelin sheath after sciatic nerve crush injury in rats via Hippo-YAP/ACSL4 pathway. Exp Neurol. 2025;384:115053. DOM 0.1016/j.expneurol.2024.115053
17. Guo M, Zhu Y, Shi Y, et al. Inhibition of ferroptosis promotes retina ganglion cell survival in experimental optic neuropathies. Redox Biol. 2022;58:102541. DOM0.1016/J.redox. 2022.102541
18. Ruf W. Roles of factor Xa beyond coagulation. J Thromb Thrombolysis. 2021;52:391-6. DOI:10.1007/s1123 9-021-02458-8
19. Казайкин В. H., Демченко Н. О, Клейменов А.Ю. Оптимизация выбора фракции, богатой тромбоцитами плазмы, для хирургического лечения макулярных разрывов. Офтальмология. 2023;20(4):664-74.
20. Jin G, Hayashi Т, Kawagoe J, et al. Deficiency of PAR-2 gene increases acute focal ischemic brain injury. J Cereb Blood Flow Metab.2005;25(3):302-13. DOM 0.1038/sj.jcbfm. 9600021

Прикрепленный файлРазмер
2025_02_143-148.pdf541.48 кб

Голосов пока нет